|
VİBRİOSİS=KIZIL
HASTALIĞI
Necla TÜRK Uzman Vet.Hekim
Vibriosis bir çok deniz
balığı türünde ve tatlı su balıklarında görülmekle birlikte tuzlu sularda
yetiştiriciliği yapılan balıkların en önemli ve en iyi bilinen
hastalıklarından biridir. Vücudun ventral kısmında ve anüs civarında
kızarık, vücutta kabarcık ve ülserlerin oluşmasıyla karakterize, bulaşıcı
bir hastalıktır. Vibrio anguillarum başta olmak üzere V. anguillarum, V.
ordalii, V. alginolyticus, V. damsela, V. cholerae, V. Vulnifucus hastalığa
neden olan vibrio türleridir. Son yıllarda salmonidlerde görülen hitra
hastalığının etkeni V. salmonicida olup, neden olduğu enfeksiyon soğuk su
vibriozisi olarak adlandırılmaktadır. Ayrıca vibrioların neden olduğu
hastalığa red pest, red disease, pestis rubra anguillarum, cold pest, ülcer
disease, eye disease, bakteriyel dermatitis ve tuzlu su furunkulozis gibi
isimlerde verilmektedir. Son zamanlarda Listenellozis olarak da
isimlendirilmektedir.
Vibriosis alabalık ve sazanlar
dahil, hemen tüm balık türlerinde görülmekte, yılan balıkları arasında
enzootik olarak seyretmektedir.
Etiyoloji
Vibriolar ilk defa 1718 yılında
yılan balıklarında görülen bir epizootiden izole edilmiştir. Canestri
tarafından ilk defa 1893 yılında identifiye edilerek etken Bacterium
anguillarum olarak isimlendirilmiştir. 1909 yılında ise Bergman tarafından
Vibrio anguillarum olarak adlandırılmıştır.
Hastalık daha çok, suların
ısındığı, kirlendiği ve oksijenin yetersiz olduğu zamanlarda görülmektedir.
Özellikle olumsuz çevre koşulları, beslenme bozuklukları, boylama, kötü
hijyen koşulları ve paraziter etkenlerin varlığında suyun normal florasında
yer alan vibriolar deri, solungaçlar ve anüs yoluyla vücuda girerek
hastalığa neden olmaktadır.
V. anguillarum, deniz balıklarındaki
vibriosis vakalarından en sık izole edilmekte ve en patojen vibrio türü
olarak kabul edilmektedir. Bakterinin patojenitesi sahip olduğu pJM I
plazmiti nedeniyledir. Etken gram (-), hareketli, kıvrık bir basil olup,
besi yerleri üzerinde krem renginde, yuvarlak ve kenarları düzgün koloni
tarzında ürer. Katalaz, oksidaz, indol, beta-galaktozidaz ve ADH pozitif, H2S,
lizin, ornitin dihidrolaz ve üre negatiftir. % 0.5-3 tuzlu ortamlarda
kolaylıkla ürer ve 0/129 10 mg vibriostatik ajana duyarlıdır.
V. vulnifucus, sadece yılan
balıklarında görülmektedir. V. alginolyticus, ilk defa İsrail’ de çipura
balığından izole edilmiştir. Aynı etkenden kaynaklanan enfeksiyonlar, kefal
ve yılan balıklarında da görülmüştür.
V. carchariae, deniz
akvaryumunda bir köpek balığından izole edilmiştir. Çipura ve levrekten hiç
izole edilememiştir.
V. damsela, ilk defa
Kaliforniya kıyılarında yaşayan damsel (dip balıkları) balıklarından izole
edilmiştir. Ayrıca insanlardaki yaralardan izole edilmesi, zoonoz hastalık
olması açısından önemlidir.
V. ordalii, hastalık çipura
ve levreklerde hemorajik septisemiye neden olur.
V.
alginolyticus: Besi yeri üzerinde
yaygın koloniler veren, kanı hemoliz eden, %0-10 tuz içeren ortamlarda
üremeyen, katalaz, oksidaz, H2S, indol, ornitin ve lizin
dekarboksilaz pozitif (+), arginin dihidrolaz negatiftir (-).
V. cholerae
(non-01): İlk defa Japonya’da
1977 yılında ayı balıklarından izole edilmiştir. Hasta balıklarda vücut
yüzeyinde petechial kanamalar görülmüştür. İç organlarda konjesyonedir. Ayı
ve yılan balığında yapılan deneysel enfeksiyonlar sonucunda balıklarda
yüksek patojeniteye sahip bakteri. V.cholerae (non-01) insan için patojen
olan V.cholerae biyotip Eltor’dan ornitin dekarboksilaz ve mannoz negatif
(-) olamsıyla ayrılır.
V.
parahaemolyticus: Gram negatif,
hareketli (flagellar hareket), oksidaz pozitif, katalaz pozitif, O/129’ a
duyarlı, sporsuz, kapsülsüz, fermantatif / oksidatif, aerob, fakültatif -
anaerob, kıvrık - düz ve halofilik (tuza ihtiyaç gösteren) çomakçıklardır.
Glikozdan asit yapar, laktoza etkimez. İndol pozitif, H2S
negatif, sitrat negatif, üre negatiftir. İnsan veya tavşan kanlı jelozda
hemoliz yapar. Halofilik olan bakteri tuzsuz ortamlarda ve, tuz miktarı %10
olduğunda üreyemez. Bakteri O antijenlerine göre 11, K antijenlerine göre
ise 57 serotipe ayrılmaktadır.
V. mimicus:
Pişirilmemiş deniz ürünleri ve en
çok istiridyelerin yenmesiyle kolera formunda enfeksiyonlara neden
olmaktadır. Bu bakteri tipinin ürettiği enterotoksinlerin termostabil (ısıya
dayanıklı) olduğu bilinmektedir.
V. fluvialis:
Oksidaz, nitrat, arginin, suroz,
arabinoz pozitif bir bakteri.
V.
salmonicida: Soğuk su
balıklarında vibriosis etkeni bakteri.
Epizootiyoloji ve Patojenite
V. anguillarum deniz suyunun ve
balık bağırsaklarının normal florasında bulunmaktadır. Deniz suyu
sıcaklığının artmasıyla yoğunluğu artmaktadır.
Hastalığın oluşmasının nedeni
olumsuz çevre koşulları ve strestir. Etken deri, solungaç ve anüs yoluyla
vücuda girmektedir. Enfekte gıdaların ağız yoluyla verilmesiyle hastalık
bulaşmaktadır. Bu nedenle taze yemler pastörize edilmelidir. Vibriozis,
deniz balıklarında su sıcaklığının yükseldiği yaz aylarında, oksijenin az
olduğu sularda, kötü hijyenik koşullarda patlak verir. Tatlı sularda 1-4
oC gibi düşük sıcaklıklarda da görülebilir. Ağır metaller vücut
yüzeyindeki mukusu denatüre etmesi nedeniyle hastalığın ortaya çıkışını
kolaylaştırır. Bu nedenle CuSO4 uygulamaları vibriozis
patlamalarına neden olmaktadır.
Hastalık deniz balıklarında olumsuz
çevre koşulları ve stres varlığında % 40-60’lara varan mortaliteye neden
olmaktadır. Salmonidlerde ise mortalite oranı % 90’ a kadar çıkamaktadır.
Klinik Bulguları
Hasta balıklarda deride kararma,
vücut yüzeyinde nekrotik lezyonlar ve eritemler vardır. Eritemler, karın
altında, yüzgeç kaidelerinde ve ağız etrafında görülürler. Bazı balıklarda
ascites ve ekzoftalmus vardır.
Otopside, karın duvarında hemoraji,
karaciğerde hemoraji, şiddetli anemi, bazen sararma ve enteritis görülür.
Bağırsakların içi açık renkli şeffaf bir sıvıyla doludur, pilorik seka
hiperemiktir. Bazı olgularda dalak büyümüştür.

Teşhis
İç organlardan
genel ve spesifik besi yerlerine ekim yapılması; Vibriosis için kanlı
triptoz agar, tavşan kanlı nutrient agar ve BHIA’ya iç organlardan (böbrek,
dalak, karaciğer) ekim yapılır.
Ekim yapılan
besiyerleri 22-37 ºC’de 24-48 saat kadar etüvde bekletilir ve her gün üreme
olup olmadığına dair kontrol edilir. Üreme olan petrilerdeki kolonilerin
subkültürleri yapılır. Subkültürü yapılan besiyerlerinden hareket, oksidaz,
katalaz testleri yapıldıktan sonra Gram boyama, Giemsa boyama yapılarak ışık
mikroskobunda immersiyon objektifte muayene yapılır. Gram negatif (-),
aktif hareketli, oksidaz (+) kolonilerin identifikasyonu yapılır.
İdentifikasyonda klasik yöntemlerin yanı sıra API 20E kullanılmaktadır.
|
Organizma |
TCBS üzerinde koloni
rengi |
|
V. cholerae |
SARI |
|
V. alginolyticus |
|
V. cincinnatiensis |
|
V. fluvialis |
|
V. furnissii |
|
V. metschnikovii |
|
Aeromonas species |
|
Enterococcus species |
|
V. damsella |
YEŞİL |
|
V. hollisae |
|
V. parahaemolyticus |
|
V. vulnificus |
|
V. mimicus |
|
V. carchariae |
SARI
/ YEŞİL |
|
Proteus species |
|
Pseudomonas species |
MAVİ
/ YEŞİL |

Kontrol ve Tedavi :
En etkili kontrol aşılamadır. Vibriozis de aşılama 1-4 gram arasında banyo 15 g’ dan büyük balıklarda
enjeksiyon yöntemiyle yapılmaktadır. Son yıllarda oral aşılama konusundaki
çalışmalardan başarılı sonuçlar alınmış olup ticari olarak bulunmaktadır.
Hastalığın tedavisi yem içerisine
katılacak kemoterapötiklerle yapılabilir. Tedavide kullanılacak
antibiyotiklerin seçimi antibiyogram testi sonucuna göre yapılmalıdır.
Oxytetracycline, 55-75 mg/kg canlı balık ağırlığı (CA) dozunda 10 gün,
Flumequine 12-20 mg/kg CA dozunda 7 gün, sulfametazin 100-200 mg/kg CA
dozunda 10-15 gün ve oksonilik asit 5 mg/kg CA dozunda 10 gün
kullanılabilir. Ayrıca balığın direncini artırmak için vitamin kompleksleri,
özellikle yeme C vitamini ilavesi önerilmektedir.
Numune Nasıl Gönderilmelidir?
Klinik belirtileri gösteren balıklar
seçilmelidir.
Alınan örnekler popülasyonu temsil etmelidir.
Yapılacak her muayene için ayrı örnekler
alınmalı ve balık sayısı büyük balıklarda en az 10, yavru balıklarda 40-50
adet olmalıdır.
Mümkün olduğunca çabuk ve canlı
ulaştırılmalıdır. Bunun için en uygunu oksijen sistemli balık tanklarıdır.
Mümkün olmazsa balıklar steril naylon torbalara konulup, torbalar buz
içerisine konularak balığın metabolizması yavaşlatılır. Balıkların olduğu
torbaya BUZ KONULMAMALIDIR.
Ölü balıklar ise buz içerisinde soğuk zincirle
ulaştırılır.
Bakteriyel muayene için antibiyotik tedavisi
uygulanmamış balıklar gönderilmelidir.
Numune balığa ait anemnez bilgileri (aşılama,
orjin, tedavi, yem vs.) yazılı yada sözlü olarak laboratuvar uzmanına
verilmelidir.
KAYNAKLAR
1.
Amos, K.H.
(1985)
Procuders for the dedection and ıdentification of Certain Fish
Pathogens. 3rd. Ed. Fish Health Section, American Fisheries
Society. Corvallis, OR, 114.
2.
Austin B. and Austin, D. A.
1987 : Methods For the Microbiological Examination of Fish and shellfish.
Simon and Schuster, Chichester, UK.
3.
Austin, B. and Austin, A.D.
(1993) Bacterial fish pathogens: Disease in farmed and Wild Fish. 2nd.
Ed. Simon and Schuster, Chichester, UK.
4.
Austin, B. and Lee, J.V.
(1992)
Aeromonodaceae and Vibrionaceae. In: İdentification in Applied and
Environmental Microbiology. 163-182. ( Board, R.G., Jones, D. And Skinner,
F.A. Eds.) Society for Applied Bacteriology Series. 29, Blackwell, London.
5.
Austin, B. and Mclntosh, D.
(1991) New Bacterial fish pathogens and their implications for fish
farming. Rev-in Med. Microbiol., 2: (4), 230-236.
6.
Cowan, S.T. and Steel K.J.
(1993) Manual for the Identification of Medical Bacteria. 3rd.
Edt. (Barrow, G.I. and Feltham, R.K.A. Eds.) Cambridge Univ. Press. Hardback.
7.
Larsen, J.L.,
Pedersen, K. and Dalsgaard, I.
(1994)
Vibrio anguillarum serovars associated with Vibriosis in fish. J.
Fish Dis., 17: 259-267. |